高度分化的心肌細胞幾乎沒有分裂能力，它們在a-腎上腺素的刺激下通過Ras/MEK途徑發生肥大生長。所有的心肌細胞都能自律性的將膜去極化和復極化。所有的心肌細胞收縮都是肌源性的，不受神經系統刺激。心肌細胞具有復雜的信號網絡，從而調節其在心臟節律性的泵出功能中的作用。心力衰竭時，心肌細胞的肥大和凋亡導致心肌收縮功能的下降。更好地了解心臟信號系統有助于揭示心肌細胞死亡的細胞機制。

   RCM是從出生2天大鼠的心臟分離得到的，原代凍存，冰凍運輸。每管細胞密度超過1×10^6/ml。細胞特性經肌球蛋白（myosin）、sacromeric alpha-actinin 和原肌球蛋白免疫熒光鑒定。本細胞經檢測不含支原體、細菌、酵母菌和真菌。如采用ScienCell實驗室提供的培養條件，可保證此細胞繼續的培養。HCM因為不能增殖，故不能夠擴大或長期培養。

分離方法：

大鼠心肌細胞比乳鼠心肌難養，用無血清培養基，呈桿狀，橫紋清楚，在培養基里細胞不搏動。大鼠心肌細胞分離一般是采用二型膠原酶分離，濃度為1mg/ml（用無鈣臺氏液配制），同時酶液里加入牛磺酸，BSA。一般采用Langendorff灌流的方法，大鼠開胸后，迅速取出心臟，放入冰的臺氏液中，找到主動脈后，掛上Langendorff裝置，衡流泵灌入無鈣臺氏液（37度），開始心臟會搏動幾下，這樣把心臟中的淤血擠出（此處也有人用有鈣臺氏液灌流，好讓心臟充分搏動，把淤血擠出，不過我們摸索發現只要取心臟到掛上去的時間短，一般搏動幾下就能把淤血清楚干凈了）。

幾分鐘后，換酶液開始灌流心臟，一般開始時，心臟較軟，待消化一段時間后變硬，繼續消化后又變軟，且心臟發白，這時候就可以停止消化，將心室剪下，放入KB液中，用剪刀剪碎后，用滴管吹打，取上清，繼續加入KB液，吹打，直到上清液不渾濁為止，一般吹打3－4次即可。將各次上清合并，吹打過濾后，沉降20分鐘左右，棄上清，加入無血清培養基（MEM，不含L－谷氨酰胺，并加入肌酸，牛磺酸，BSA，肉毒堿，HEPES），吹打，1000轉/分離心半分鐘，棄上清，再洗1－2次后，將沉淀加入到6％的BSA中沉降15－20分鐘（純化心肌細胞），然后計數，點板或培養。

此法中如果各步注意無菌操作，最后先用加倍雙抗的培養基培養24h后，再換正常培養基，可適用于條件不是很好的試驗室。如果能在板或瓶內加入Laminin處理后，貼壁很好。如果分離出來的心肌細胞，逐級復鈣后培養，狀態更好。最佳狀態此中方法能培養7天以上。