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包裹線粒體的融合脂質(zhì)體作為治療骨關(guān)節(jié)炎有前景的遞送系統(tǒng)

欄目:最新研究動態(tài) 發(fā)布時間:2024-05-24
這些發(fā)現(xiàn)表明,F(xiàn)MCs是一種非常有效和有前途的MT遞送策略,以促進軟骨再生,并突出了它們作為MT轉(zhuǎn)移治療的新平臺的潛力......

 

 

       利用線粒體(MT)治療人類疾病已經(jīng)進行了許多嘗試;然而,MT很大,因此很難有效傳遞。因此,建立了基于膜融合的轉(zhuǎn)移策略。設(shè)計并合成了融合線粒體膠囊(FMCs),其包含中性脂質(zhì)(PE)、陽離子脂質(zhì)(DOTAP)、芳香族脂質(zhì)(Liss Rhod PE)和三種類型的脂質(zhì)體(FMC0、FMC1和FMC2)。影響膜融合效率的DOTAP含量在不同的FMC制劑中有所不同。通過DLS、TEM和AFM分析這些FMC的特征,并分別通過FRET、mtDNA拷貝數(shù)和CLSM確認FMC-MT和FMC軟骨細胞之間的封裝和融合效率。與裸MT相比,F(xiàn)MCs向軟骨細胞的輸送速度更快、效率更高。此外,融合是一種比內(nèi)吞作用更穩(wěn)定的遞送方式,這一點從減少了對線粒體自噬的誘導而得到了證明。體外和體內(nèi)實驗表明,F(xiàn)MCs減少炎性細胞因子和MMP13的表達,增加細胞外基質(zhì)成分的表達,促進軟骨再生。這些發(fā)現(xiàn)表明,F(xiàn)MCs是一種非常有效和有前途的MT遞送策略,以促進軟骨再生,并突出了它們作為MT轉(zhuǎn)移治療的新平臺的潛力。本研究于2023年10月發(fā)表在《Biomaterials》期刊上,IF=14.0。

主要技術(shù)路線

 

 

 

 

主要研究結(jié)果

1、FCs和FMCs的表征及MT包封評價

       在這項研究中,作者從干細胞裂解后獲得的核/MT/細胞質(zhì)中分離出MT(裸(n)MT)。為了確認分離線粒體的純度,采用Western blot方法鑒定每個部分中的標記蛋白。核膜蛋白Lamin B1被鑒定為核分離標記,細胞骨架蛋白α-微管蛋白被鑒定為細胞質(zhì)分離標記,線粒體外膜蛋白TOMM20被鑒定為線粒體分離標記。因此,可以確定在每個片段中都表達了相應的標記物,并以此驗證線粒體分離良好。為了證實分離的MT的功能,作者測量了裂解物中ATP的量,以及細胞色素C氧化酶(CCO)的表達;兩者都隨著MT數(shù)量的增加而增加。這表明從干細胞分離的MT在細胞外的功能是正常的。

       陽離子脂質(zhì)體被用作運送核酸的載體,核酸是一種陰離子物質(zhì),其中一個典型的例子是lipofectamine。受此啟發(fā),作者假設(shè)陽離子脂質(zhì)體將有利于負離子線粒體的傳遞,并進行了這項研究。為了穩(wěn)定地包封陰離子MT,作者制造了融合越來越多的陽離子脂質(zhì)DOTAP的促聚變膠囊(FC)。圖1A提供了該方法的簡要說明。脂質(zhì)體包括PE、Liss Rhod PE和DOTAP。作者改變陽離子脂質(zhì)DOTAP的比例為0、1和2。Liss Rhod PE發(fā)出紅色熒光,使作者能夠?qū)χ|(zhì)體進行詳細成像。

       首先,作者用CLSM從形態(tài)上證實了MTs被包裹在FCs中(圖1B)。用Mitotracker Green標記的MT被包裹在脂質(zhì)體中,綠色熒光與羅丹明(脂質(zhì)體)的紅色熒光重疊。這些重疊的(黃色)信號表明許多MT被包裹在脂質(zhì)體中。此外,體素圖像顯示,脂質(zhì)體中的MT是穩(wěn)定的。這些結(jié)果表明,F(xiàn)C和FMC的形狀沒有差異,表明FMC包裹線粒體保持了穩(wěn)定的結(jié)構(gòu)。

       為了定量比較MT的包埋效率,進行了FRET(熒光共振能量轉(zhuǎn)移)分析(圖1C)。MT用綠色Mitotracker標記(λex=490/λem=516),脂質(zhì)體用Liss Rhod PE標記(λex=560/λem=583)。利用488 nm激光激發(fā)并測量發(fā)射波長范圍為520~650 nm的曲線圖,計算了FRET效率。含DOTAP量最高的FMC2對MT的包封率最高,且隨DOTAP含量的增加而增加??傮w而言,陽離子脂質(zhì)體FMC1和FMC2的包封率高于陰離子脂質(zhì)體FMC0。陽離子脂質(zhì)體與陰離子線粒體相互作用的條件更有利,其效率與DOTAP的量成正比。因此,基于DOTAP的陽離子脂質(zhì)體可以作為線粒體膠囊的假設(shè)得到了證實。

       接下來,進行了篩選實驗,以確定MT與FC的最佳包封率。作者發(fā)現(xiàn)1:2的比例是最有效的。這一結(jié)果得到了異質(zhì)性分析的驗證,結(jié)果表明,以此MT與脂質(zhì)體的比例制備的FMCs中,大鼠線粒體DNA在細胞中的表達最高。因此,在隨后的所有實驗中,作者都使用了這個比率,并將得到的被包裹的線粒體膠囊稱為FMC2。

       接下來,利用原子力顯微鏡(AFM)(圖1D)研究了不同DOTAP比率的FCs的物理性質(zhì)。FCs的直徑相似(600-700 nm),但高度不同:FC0測量130 nm,F(xiàn)C1測量50 nm,F(xiàn)C2測量18 nm。相應的RQ值分別為49.85、17.31和7.56。這些結(jié)果證實了FCs的柔性與DOTAP的量成正比,而其剛性與DOTAP的量成反比。這些發(fā)現(xiàn)突出了DOTAP含量和靈活性對于優(yōu)化脂質(zhì)體MT包封率的重要性。綜上所述,這些結(jié)果表明FMC2是最佳制劑。

       FCs和FMCs用透射電子顯微鏡(TEM)成像(圖1E)。在形態(tài)上,F(xiàn)Cs和FMCs的形態(tài)沒有差異,表明包裹線粒體的FMCs保持了穩(wěn)定的結(jié)構(gòu)。

       此外,作者通過動態(tài)光散射(DLS)測量脂質(zhì)體大小的變化,間接證實了這些MT被包裹到FCs中。不含MT的FCs(MT非囊化,僅脂質(zhì)體)小于含有線粒體(MT囊化)的FMCs(圖1F)。約25 ~ 80nm的大小變化表明脂質(zhì)體隨著MT的包封而變大。

       接下來,作者研究了DOTAP的量如何影響MT包裹后脂質(zhì)體的Zeta電位(ZP)(圖1G)。MT本身具有約38 mV的負電荷;然而,脂質(zhì)體中帶正電荷的脂類攜帶+40 mV或更多的高電荷。當帶正電的DOTAP的比例增大時,ZP增大。使用含有DOTAP的陽離子脂質(zhì)體(FC1和2)有利于包裹MT,因為它比陰離子脂質(zhì)體(FC0)更容易通過靜電作用與MT的陰離子膜結(jié)構(gòu)反應。此外,與陰離子NMT或FMC0相比,陽離子FMC1和2有望與細胞膜更有利地相互作用。

 

圖1 FCs和FMCs的表征,以及FCs的NMT封裝

 

2、FMCs及其內(nèi)部線粒體的穩(wěn)定性與NMT的比較

       接下來,作者研究了FCs和FMCs隨時間的結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性,并與nMT進行了比較(圖2)。將制備的FCs和FMCs分別在緩沖溶液中保存12周和5天,并用DLS測量包膜形成的保留程度(圖2A)。結(jié)果證實,無論DOTAP比率如何,F(xiàn)CS在長達12周的時間內(nèi)保持其原始大小(左圖)。通過這些結(jié)果,作者強調(diào),作者生產(chǎn)的融合蛋白膠囊結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,可以長期儲存。然而,nMT的大小從第3天開始顯著增加(右圖)。作者確定,這種結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定的現(xiàn)象可能是線粒體分解的開始,也可能是生理/生理功能障礙的跡象。換句話說,從第3天開始就確定了nMT的生存能力。因此,確定長期檢查FMC的穩(wěn)定性是沒有意義的,并對穩(wěn)定性進行了長達5天的評估。結(jié)果表明,脂質(zhì)體在包裹MT后的第5天內(nèi),其大小基本保持不變,說明脂質(zhì)體的穩(wěn)定性在5天內(nèi)沒有明顯變化,這是因為脂質(zhì)體的陽離子性質(zhì)阻止了靜電斥力的融合。

       為了直觀地證實這些結(jié)果,作者用CLSM觀察了第0天和第3天nMT和FMCs的形態(tài)(圖2B)。在第0天,nMT和FMCs分布均勻;特別是體素成像證實MT被很好地包裹在FMCs中。體素圖像是指對z堆疊圖像中的每個像素進行三維重建,從而創(chuàng)建3D表示。在第3天,由于MT之間的聚集,溶液中的nMT大小增加。相比之下,F(xiàn)MCs的分布保持穩(wěn)定,包埋形式保持良好。進行了透射電子顯微鏡檢查,以進一步澄清在第3天觀察到的變化(圖2C)。對于以前的結(jié)果,F(xiàn)MCs保持了它們的形態(tài)和分布,但nMT形成了聚集體,有些已經(jīng)被破壞。

       上述結(jié)果表明,在體外條件下,F(xiàn)MC提高了MT的物理穩(wěn)定性。然而,由于這些結(jié)果不能顯示包裹在FMC內(nèi)的MT的活性,作者檢查了線粒體細胞色素C(CytoC)的表達水平,以評估MTs的活性(圖2D)。眾所周知,當細胞從MT內(nèi)部泄漏到外部時,細胞凋亡就開始發(fā)生,當MT處于不健康狀態(tài)時,就會發(fā)生細胞C泄漏。制備nMT和FMC2,在4?C培養(yǎng)一天,第二天(第1天)裂解標本并進行分析。由于TOMM20的表達類似于nMT和FMC2,因此可以看出它含有相同數(shù)量的MT。然而,已證實FMC2的線粒體CytoC表達水平大約是nMT的兩倍。由于這意味著在nMT中發(fā)生了大量的CytoC滲漏,因此可以判斷存活的可能性很低。基于這些結(jié)果,證實了FMC2在體外一天的狀態(tài)下能夠增加MT的結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性和活性。

 

圖2 與nMT比較,評價FMCs的穩(wěn)定性及其內(nèi)部線粒體的穩(wěn)定性

 

3、應用FMC對線粒體遞送方法的評價

3.1.FMCS轉(zhuǎn)導脂多糖處理的C28/I2細胞

       接下來,作者使用WST-1試驗評估脂質(zhì)體遞送系統(tǒng)的細胞毒性(圖3A)。通過處理高達75μg的細胞來評估三種類型的FC;在這個劑量下,F(xiàn)C1沒有顯示出細胞毒性。30μg的FC0和FC2對細胞的存活率>80%,7.5、15和30μg的FC2對細胞的存活率最高可達4h,但沒有明顯的細胞毒性。此外,作者還將細胞暴露于FCs(4和8 μg)0.5h和1h,以觀察融合效率。融合后1h的融合效率高于0.5h,8 μg的FCs融合效率高于4μg的FCs,在此基礎(chǔ)上,作者進一步實驗采用8μg的FC劑量。

       CLSM驗證融合基因MT的傳遞(圖3B)。受體C28/I2細胞中的MT被染成藍色,來自供體MSCs的MT被染成綠色,F(xiàn)MCs被標記為紅色。受體MTs(藍色)的熒光強度相似,但來自FMC1和FMC2的供體MTs(綠色)的信號比來自nMTs和FMC0的信號強得多。紅色熒光強度(代表融合效率)也被測量,結(jié)果證實FMC2表現(xiàn)出最有效的融合MT遞送。

       最后,為了定量地驗證這一現(xiàn)象,分析了異種MT(圖3C)交付后的mtDNA拷貝數(shù)。由于受體細胞(C28/I2)是人類來源的,供體(異種)MT是從大鼠來源的成肌細胞L6細胞系中分離出來的。4μg MTs給藥后1h,F(xiàn)MC1和FMC2給藥的大鼠細胞內(nèi)MT比nMT多,4h后以FMC2給藥最多。相比之下,nMT和FMC0遞送的數(shù)量要少得多,1h和4h的水平相似。因此,F(xiàn)MC2是在最短時間內(nèi)遞送最大數(shù)量MT的平臺。

       通過監(jiān)測與脂多糖處理的C28/I2細胞的膜融合,作者確認FMC2是最有效的MT遞送平臺(圖3D)。在圖3D中,綠色信號表示質(zhì)膜(PM),青色信號表示傳送的MT,紅色信號表示FMC2。與未經(jīng)處理的(NT)細胞不同,暴露于nMT和FMC2的細胞胞漿中含有MT。

       此外,暴露于FMC2的細胞中的綠色和紅色信號重疊,表示膜融合(黃色)。同樣,即使細胞暴露在空的(無MT)FC2膠囊中,也會發(fā)生膜融合。綜上所述,這些結(jié)果表明,nMT和FMC0通過內(nèi)吞途徑傳遞,F(xiàn)MC1和FMC2通過膜融合途徑傳遞,提示后一種方法是更有利的策略。

 

圖3 FMCs的細胞膜融合比NMT的內(nèi)吞作用提供線粒體的速度更快,數(shù)量更多

 

3.2 MT的胞內(nèi)和膜融合傳遞途徑的差異

       如上所述,有兩種途徑可以將MT通過NMT和FMC2輸送到細胞中(圖4A)。內(nèi)吞作用是將外來物質(zhì)輸送到細胞內(nèi)的一種常見機制;然而,當外來物質(zhì)通過內(nèi)吞作用輸送時,它必須從內(nèi)吞體內(nèi)逃逸,因為剩下的任何物質(zhì)都會被溶酶體移走并降解。因此,通過內(nèi)吞作用進入細胞質(zhì)的MT有被降解的風險。相比之下,由FMCs交付的MT不會經(jīng)歷這一過程。相反,F(xiàn)MCs與細胞膜融合,形成一個通道,允許將包裹的MT直接輸送到細胞質(zhì)。

       用CLSM(圖4B)觀察了用這兩種方法運送到細胞的線粒體的命運。線粒體用MitoTracker染成藍色,早期內(nèi)體(EE)染成綠色,F(xiàn)MC2染成紅色。未觀察到nMT的脂質(zhì)體信號。僅觀察到EE和MT信號。圖4B中的裁剪圖像顯示了EE和MT信號的重疊(青色;由紅色箭頭表示)。此外,直線剖面圖顯示綠色峰和藍色峰重疊(紅色突出顯示)。相反,F(xiàn)MC2脂質(zhì)體信號遍布細胞膜,證實融合發(fā)生,EE和MT信號是分開的(黃色箭頭)。同樣,線條輪廓也不重疊(黃色突出顯示)。這些結(jié)果證實了NMT通過內(nèi)吞作用進入細胞,F(xiàn)MC2通過膜融合傳遞MT。

       nMT和FMC2的關(guān)鍵區(qū)別在于它們通過內(nèi)小體進入細胞,而FMC2通過膜融合傳遞MT。因此,作者接下來檢查了內(nèi)體pH的影響。作為MT膜電位指標的JC-1染色證實,與pH 7.4相比,在pH 5.5(晚期內(nèi)吞體內(nèi)的pH)時,MT膜電位降低。這意味著MT可能暴露在酸性條件下,導致功能不佳。因此,內(nèi)吞作用并不是MT傳遞的最佳方式。

       通常情況下,如果溶酶體中的外來物質(zhì)沒有逃逸,它們會被溶酶體清除。因此,為了確認傳遞的MTs是否被消化在細胞質(zhì)中,作者將溶酶體染色為綠色,并用CLSM觀察細胞(圖4C)。對于nMT,大量的MT與溶酶體重疊,形成青色信號(紅色箭頭);這種重疊被線條輪廓(紅色突出顯示)證實。這意味著傳遞的MT被溶酶消化。相反,成像和線條輪廓結(jié)果顯示,F(xiàn)MC2信號與MT和溶酶體信號(黃色突出顯示)明顯分開。

       線粒體自噬是啟動線粒體消化過程的消化器官?;诖耍髡哒J為評估線粒體自噬標志物的表達水平將確定轉(zhuǎn)移到細胞中的線粒體的命運(圖4D)。因此,Parkin和LC3B在FMC2中的表達水平均低于nMT,這是一個顯著的結(jié)果。這顯示了與圖4C中的結(jié)果相同的圖案?;谶@些結(jié)果,證實了當線粒體通過內(nèi)吞作用遞送時,相當數(shù)量的線粒體被溶酶體或線粒體自噬消化。另一方面,由于FMC2避免了這一過程,可以假設(shè)轉(zhuǎn)移的線粒體有更高的存活機會。因此,F(xiàn)MC2作為運送線粒體的轉(zhuǎn)運體,確保了一條安全的運送路線。

       通過在低溫(4?C)下抑制細胞膜活性,作者比較了nMT和FMC2傳遞MT的效率(圖4e)。數(shù)據(jù)顯示,在4?C時,nMT的效率是37?C的一半。然而,F(xiàn)MC2在這兩種溫度下的效率是一樣的。因此,即使細胞膜活性降低,F(xiàn)MC2也能傳遞MT。此外,作者比較了內(nèi)吞抑制條件下線粒體的傳遞效率,以證實FMC通過膜融合傳遞到細胞的說法。

       抑制條件如下:4?C(細胞膜彈性和三磷酸腺苷合成抑制)、阿米洛利(阿米洛利、巨噬細胞吞噬抑制)、CPM(氯丙嗪、網(wǎng)織蛋白介導的內(nèi)吞抑制)和FLP(非線菌素、小窩介導的內(nèi)吞抑制)。抑制內(nèi)吞作用減少了NMT對C28/I2細胞的輸送。然而,F(xiàn)MC2的交付沒有受到影響。這表明FMC2可以將貨物運送到細胞膜活性較低的細胞。這些數(shù)據(jù)再次表明,與細胞膜融合是一種比內(nèi)吞作用更有利的策略。

 

圖4 nMT和FMC2使用的線粒體傳遞途徑的差異,以及傳遞的線粒體的命運

 

4、2D OA模型(內(nèi)毒素處理的C28/I2細胞)線粒體交付后細胞功能的恢復

       以軟骨細胞系C28/I2為研究對象,采用體外培養(yǎng)的方法建立骨性關(guān)節(jié)炎模型。用內(nèi)毒素作為損傷誘導劑,誘導OA樣細胞的形成。已知脂多糖可誘導病理反應,如核因子-κB的磷酸化和細胞內(nèi)炎性細胞因子的產(chǎn)生。首先,作者建立了一個二維OA模型,以確定C28/I2細胞是否受到內(nèi)毒素的損傷。結(jié)果證實,內(nèi)毒素刺激后,Ⅱ型膠原(Col II)表達減少,基質(zhì)金屬蛋白酶-13(MMP13)、IL-6和腫瘤壞死因子-α(TNF-α)表達增加。研究還證實,線粒體功能障礙是由ATP含量下降引起的。接下來,作者檢查了MT交付到2D OA模型后細胞恢復的程度(圖5A)。nMT和FMC2作用于細胞后,Col II的表達增加,而FMC2則降低了MMP13的表達。這一作用是通過抑制傳遞的MT對NF-κB的磷酸化而實現(xiàn)的。

       用qRT-PCR檢測MT交付后編碼IL-6和TNF-α的mRNA的表達變化(圖5C),這是已知的OA相關(guān)炎癥因子。結(jié)果表明,MT介導的C28/I2細胞可減少這些炎癥因子的表達,表明MT恢復了最佳的細胞功能。FMC2的這種影響更加明顯,證實了FMC2在傳遞MT和減少炎癥方面更有效。

       此外,作者還用酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)檢測了分泌性炎癥因子的表達(圖5D)。注射MT后,經(jīng)內(nèi)毒素處理的C28/I2細胞分泌炎癥因子的能力下降。與上述結(jié)果一致,F(xiàn)MC2比NMT更有效地恢復受損軟骨細胞的正常功能。綜上所述,這些數(shù)據(jù)表明MT轉(zhuǎn)移術(shù)是治療骨性關(guān)節(jié)炎的一種有前途的方法。此外,經(jīng)FMC2途徑給藥的細胞修復效果好于nMT,提示FMC2是修復受損軟骨細胞功能的更有效的方法。

 

圖5 FMC2介導的線粒體對脂多糖處理的C28/I2細胞的治療效果的2D模型

 

5、內(nèi)毒素誘導的軟骨細胞移植后三維培養(yǎng)功能恢復的實驗研究

       將脂多糖處理的C28/I2細胞進行三維培養(yǎng),檢測細胞的聚集和分化能力。如圖6A所示,內(nèi)毒素處理的C28/I2在三維培養(yǎng)皿中難以形成聚集體。相反,與NT組(未處理組、對照組)相似,nMT和FMC2處理的細胞能夠形成聚集體,并可以進行三維培養(yǎng)。這一趨勢在播種后持續(xù)了10天以上,表明MT不僅能防止脫分化或炎癥,而且還能促進細胞團的生長。此外,細胞聚集體大小的增加表明細胞增殖或細胞外基質(zhì)的產(chǎn)生可能已被促進。聚集體形成的定量分析表明,MT的存在對細胞聚集體的數(shù)量有很大的影響,表明MT對脂多糖造成的損傷具有修復作用。

       在3D培養(yǎng)的8天中,作者檢測了編碼Aggrecan(細胞外基質(zhì)的軟骨成分)、SOX9(轉(zhuǎn)錄因子)、COLX(肥大標記)、細胞外基質(zhì)降解酶MMP3和MMP13以及腫瘤壞死因子α(圖6B)的基因的表達。在FMC2處理的細胞中,AGG的表達水平最高,SOX9的表達水平與NT相似。此外,脂多糖組和正常對照組均表達高水平的COLX、MMP3、MMP13和腫瘤壞死因子α,經(jīng)FMC2治療后均顯著下降。

       免疫熒光染色顯示,F(xiàn)MC2處理的細胞SOX9(粉紅色)和Col II(綠色,ECM)的表達增加,表明脂多糖造成的損傷已被傳遞的MT修復(圖6C)。此外,F(xiàn)MC2誘導的恢復比NMT誘導的恢復更明顯。相反,脂多糖抑制了SOX9和Col II的表達。這些結(jié)果表明,經(jīng)FMC2注射MT后,受損軟骨細胞可以恢復正常功能。

       總體而言,這些數(shù)據(jù)表明,MT可以實現(xiàn)受損軟骨細胞的功能恢復,不僅可以緩解炎癥,促進組織生成,還可以促進細胞的生長和分化。這些發(fā)現(xiàn)對開發(fā)新的軟骨再生治療方法具有重要意義。

 

圖6 3D模型(脂多糖處理的C28/I2球體)評估人工組織形成的程度和FMC2運送的線粒體的治療效果

 

6、骨性關(guān)節(jié)炎動物模型注射FMC的實驗研究

       通過關(guān)節(jié)腔內(nèi)注射MIA建立小鼠骨性關(guān)節(jié)炎模型,觀察IA注射nMT和FMC2后的組織修復情況。FMC2注射兩次(Inj.#2)小劑量(LD)每5天注射一次,nMT注射2次(Inj.#2)低劑量或高劑量(HD)和五次(Inj.#5)低劑量(LD)(圖7A)。

       在IA注射后第1天,用激光共聚焦顯微鏡觀察nMT和FMC2的定位,以確定它們是否被輸送到軟骨組織(圖7B)。將被輸送到軟骨的MT被標記為Mitotracker Deep Red,并進行了兩次劑量的測試。在nMT組,在低劑量時很少觀察到MT信號(綠色),而在高劑量時僅在一個狹窄的區(qū)域內(nèi)傳遞。相比之下,在FMC2組中,即使在低劑量時也能觀察到FMC(紅色)和MT(綠色)信號,而在高劑量時它們均勻分布在更大的區(qū)域內(nèi)。這些數(shù)據(jù)表明,通過FMC2在體內(nèi)傳遞MT是更好的。

       通過檢測血液中炎癥因子的含量,證實MT的抗炎作用。MIA致炎小鼠血液中的干擾素-γ含量高于野生型(WT)小鼠(圖7C)。然而,當MT通過FMC2給藥時,干擾素-γ的量下降到與WT小鼠相似的水平。這些結(jié)果表明,線粒體通過恢復受損炎癥組織的正常功能來減輕炎癥。

       軟骨組織用藏紅花素-O和阿爾新藍染色顯示受損的軟骨組織已修復,如硫酸甘氨酸(橙色)和酸性多糖(藍色)的表達增加(圖7D)。組織學分析注射生理鹽水組(生理鹽水),未見炎性軟骨組織恢復。然而,通過FMC2傳遞的MT使軟骨組織得以恢復。這比相同注射次數(shù)的相同劑量的#2 NMT LD恢復得更好,甚至比注射高劑量MT的#2 NMT HD組更有效。在注射相同劑量的NMT比FMC2更頻繁的NMT組(#5 NMT LD),也觀察到一些軟骨的恢復。然而,與FMC2相比,多糖(藍色)和GAGs(橙色)的染色區(qū)域顯得更窄和更弱。這些結(jié)果以量化圖表的形式呈現(xiàn)。

       接下來,作者使用Mankin評分評估了MIA誘導的骨性關(guān)節(jié)炎模型中軟骨組織損傷的嚴重程度(圖7E)。Mankin評分系統(tǒng)考慮了軟骨結(jié)構(gòu)和蛋白多糖含量,是評估骨性關(guān)節(jié)炎嚴重程度的可靠而有效的方法。FMC2組動物的得分與WT組動物相似(約2分),但#2 NMT LD組和#2 nMTHD組的得分為11-13分(與生理鹽水對照組相似)。#5 NMT LD的分數(shù)約為6分,相當于中等嚴重程度。這些結(jié)果在顯微CT掃描和軟骨下骨體積分析中也得到了證實。損傷軟骨和軟骨下骨的恢復率以FMCs最高。綜上所述,這些數(shù)據(jù)表明,通過FMC2傳遞的MT在低劑量和低治療頻率下促進有效的軟骨組織再生。

 

圖7 線粒體導入MIA誘導的骨性關(guān)節(jié)炎模型小鼠的軟骨穿透與修復

 

       在這里,作者描述了一種膜融合方法,作為一種通過含有陽離子脂質(zhì)的融合脂質(zhì)體(DOTAP)將MT遞送到靶細胞的策略。根據(jù)DOTAP比率分析了FMCs的形態(tài)和特性,并對其包封率、穩(wěn)定性和膜融合效率進行了評價。結(jié)果表明,PE:DOTAP比為1:2的FMC2效果最好。作者還進行了體外和體內(nèi)實驗,以表明膜融合方法比內(nèi)吞途徑更安全和更快地輸送更多的MT。此外,二維和三維培養(yǎng)系統(tǒng)證實,在MT交付后,ECM成分的軟骨化表達增加,炎性細胞因子的表達減少。MIA誘導的骨性關(guān)節(jié)炎模型證實,在低劑量和低頻率的治療條件下,F(xiàn)MC2比nMT更有效。因此,穩(wěn)定的MT膜融合遞送系統(tǒng)在恢復骨關(guān)節(jié)炎受損細胞或組織的功能方面具有巨大的潛力。

 

實驗方法

細胞培養(yǎng)、FC細胞毒性評價、nMT和FMC穩(wěn)定性評價、從供體細胞分離MT

參考文獻

[1] Kim HR, Cho HB, Lee S, Park JI, Kim HJ, Park KH. Fusogenic liposomes encapsulating mitochondria as a promising delivery system for osteoarthritis therapy. Biomaterials. 2023;302:122350.